实验概要
小鼠胚胎干细胞向神经干细胞的定向诱导分化
主要试剂
无菌水、0.1%明胶、DPBS、0.05%Tripsin、fibronection、Laminin、细胞基础培养液、N2B27培养液、mES培养液C、小鼠EB培养基、神经干细胞培养液(NSC培养液)
主要设备
35 mm、100 mm培养皿、12孔板、移液枪、口吸管、玻璃管
实验步骤
(1).经由EB分化法(Lee SH,2000)
②将在饲养层上培养的多能性干细胞以0.05% Trypsin消化2min,加等体积细胞基础培养液终止消化,1000rpm离心5min,弃上清并用神经干细胞培养液重悬细胞,以每皿2×105个细胞密度加入明胶包被的35 mm培养皿,在37℃、5%CO2培养箱中静置30 min,吸取上清以去除贴在明胶上的滋养层。
6个细胞的密度接种于100 mm培养皿中,在37℃、5%CO2培养箱中静置48 h。以后每天向每个100 mm培养皿中补加3mL EB 培养基。
!注意:培养皿接种后,要将细胞悬液充分摇匀后再放入培养箱,否则EB之间容易黏合在一起。
⑤分化第6天,弃去12孔板中的fibronectin,每孔加入1mL EB培养基。吸取100 mm培养皿中的EB球置入12孔板中,每孔放置20个左右EB球。
!注意:在12孔板中吸液和加液要轻,枪头紧贴皿壁,以免吹起EB球。
⑧.0.05%Tripsin消化2min,用等体积的10%FBS终止,1000rpm离心5min,用NSC M重悬细胞,并以每皿5×105个细胞的密度种植于35 mm培养皿中,37℃、5%CO2培养箱中培养。
5个细胞的密度种植于提前包被PDL和laminin的35 mm培养皿中,37℃、5%CO2培养箱中培养扩增。PDL和laminin的包被方法为:在新的35 mm培养皿中每皿加入50μg/mL的PDL 1mL,室温静置过夜;第二天弃去皿中的PDL液体,用无菌水冲洗皿底3遍,室温静置晾干,每皿加入5μg/mL的laminin 1mL,37℃、5%CO2培养箱中静置过夜,接种前弃去laminin。
①提前1 h用0.1%明胶包被35 mm培养皿,孵育1 h后弃去明胶。
5的细胞密度加入明胶包被处理后的35 mm培养皿,在37℃、5%CO2培养箱中静置30 min,吸取上清以去除贴在明胶上的饲养层细胞。
5每皿的密度接种于35 mm培养皿中
⑤按第④步的描述消化传代并以N2B27培养液重悬细胞,以每皿9.6×104个细胞的密度接种于弃去提前1h包被0.1%明胶的35 mm皿中,并加入1μM的RA。
⑦ 再过6天后传代并以NSC 培养液重悬,以每皿5×105个细胞的密度接种于提前包被了PDL和laminin的35 mm培养皿中,培养液为NSC培养液,37℃、5%CO2培养箱中培养扩增。