一、固定细胞的染色方法
方法一
2.3ml PBS洗一次。
4.离心弃去固定液,3ml PBS重悬5min。
6.用1ml PI染液,4℃避光30min。
1.收集细胞(1×106个),500~1000r/min离心5min,弃去培养液。
3.500~1000r/min离心5min去PBS/FCS,加入500μl PBS/FCS和500μl的多聚甲醛固定液,轻轻混匀,在4℃下固定4min。
5.1ml PBS/FCS洗3次,每次5min。
7.500~1000r/min离心5min去PBS/FCS,用1.0ml PI染液,4℃避光至少30min。染色在24h之内皆可行,流式细胞仪分析。
2)调亡细胞的TUNEL的流式细胞仪分析
2.1%多聚甲醛低温下固定15min。
4.PBS轻洗1次
6.PBS轻洗1次。
8.含0.1% Triton-X 100的PBS轻洗1次。
5.1ml PBS/FCS洗3次,每次5min。
7.500~1000r/min离心5min去PBS/FCS,用1.0ml PI染液,4℃避光至少30min。染色在24h之内皆可行,流式细胞仪分析。
2)调亡细胞的TUNEL的流式细胞仪分析
2.1%多聚甲醛低温下固定15min。
4.PBS轻洗1次
6.PBS轻洗1次。
8.含0.1% Triton-X 100的PBS轻洗1次。
10. 流式细胞仪分析红色(PI)对绿色荧光(FITC)的地形图。
3)ISNT的流式细胞仪分析
2.1%多聚甲醛低温下固定15min。
4.PBS轻洗1次。
6.PBS轻洗1次。
8.含0.1% Triton-X 100的PBS轻洗1次。
10. 流式细胞仪分析红色(PI)对绿色荧光(FITC)的地形图。
二、非固定细胞的染色方法
1.悬浮生长的细胞在培养状态下加入Heochst 33342,终浓度为1μg/ml;帖壁生长的细胞用含有0.02%EDTA的0.25%胰蛋白酶消化成单细胞悬液,离心,弃上清,用1ml全培养液重悬细胞,加入Heochst 33342,终浓度为1μg/ml,37℃孵育7~10min。
3.加入1.0ml PI染液,4℃避光染色15min。
5.流式细胞仪分析。
2)Annexin V/PI双染色法
2.用孵育缓冲液洗1次,500~1000r/min离心5min。
4.500~1000r/min离心5min沉淀细胞,孵育缓冲液洗1次。