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线粒体提取试剂盒 齐一现货供应

产品信息

线粒体提取试剂盒

产品简介
线粒体提取试剂盒用于快速从动物细胞或组织中分离出完整、纯化的线粒体。线粒体的分离原理基本上采用:*,通过机械方法破裂细胞;第二,通过低速差速离心去除残渣碎屑和巨大细胞器;第三,通过高速差速离心获得线粒体。

适合于动物软组织(肝或脑组织)和硬组织(肌肉)以及培养细胞的线粒体的制备。获得的线粒体纯度较高,并且绝大部分分离获得的线粒体都含有完整的内膜和外膜,并具有线粒体的生理功能。可以被用于细胞凋亡、信号传递、代谢和蛋白组学等的研究。产品不含污染性蛋白酶和核酶。


试剂盒以外自备仪器和试剂
低温高速离心机、剪刀、微量移液器、1.5m L离心管、涡旋振荡器、相差显微镜下、PBS

保存条件:

-20℃保存。

注意事项:

1、   全程低温操作,将样品管放在冰水浴而不是碎冰块中。

2、   微量制备比大规模制备操作更方便和快速,因而更容易获得完整的线粒体。

3、   在不破坏亚细胞器的情况下破碎细胞是制备线粒体的Z关键环节。与组织块相比,细胞特别是贴壁培养细胞在用玻璃匀浆器匀浆时较难破壁,因而要选用小容量玻璃匀浆器、间隙严密的研杵上下研磨培养细胞。在相差显微镜下检查未裂解细胞应在50%左右即可。过度研磨将破坏线粒体,研磨不足将降低得率。

4、   以离心力g计算正确的离心速度,不同的离心机可据此精确计算离心速度。

5、   进行Western Blot和2D电泳,可直接加入样品缓冲液裂解线粒体。

6、   为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

操作规程

1、   样品的处理

A、  培养细胞裂解匀浆

a、    按照常规方法收集细胞。用PBS洗涤一次细胞并计数, 离心(2000rpm,5min)收集细胞,吸尽上清。每次提取需要5×107个细胞。

b、   加入1.5mL预冷的裂解液重悬细胞,冰浴放置10~15min。

c、  将细胞悬液转移到小容量玻璃匀浆器内,冰浴的过程中用间隙严密的研杵研磨细胞30~40次。

(相差显微镜下检查未裂解细胞应在50%左右即可)

d、   转入第2步进行操作。

B、组织裂解匀浆

a、    称取100~200 mg新鲜组织如肝脏、脑、心肌等,PBS或生理盐水冲洗,洗净血水,滤纸吸干。

b、   把组织放在一个置于冰上的离心管或培养皿中,用剪刀或刀片把组织剪切成非常细小的组织碎片。

c、    加入1.5 mL冰预冷的裂解液,冰浴的过程中用间隙严密的研杵研磨细胞20次。

(相差显微镜下检查未裂解细胞应在50%左右即可)

d、   转入第2步进行操作。

2、   将细胞或组织匀浆物转移到预冷的离心管中,4℃,800×g离心5 min。细胞核、大的膜碎片、未裂解细胞等在管底。

3、   在另一个新的预冷的离心管中预先加入0.5mL 溶液A,将匀浆后离心得到的上清液0.5mL(溶液A:上清液体积=1:1)沿管壁小心地加入含有溶液A的离心管中,覆盖于溶液A的上层。

4、    4℃离心(15,000×g 10 min)。离心后的上清为胞浆成分,将上清转移到新离心管,沉淀则为线粒体。

5、    往沉淀中加入0.2 mL漂洗液重悬线粒体沉淀,4℃离心(15,000×g 10 min),弃上清。

6、   用50 ~100μL储存液或合适的缓冲液重悬线粒体沉淀,立即使用或?70 oC保存。

(加入储存液体积的估算:50 μL/每100 mg组织,100 μl/5 × 107个细胞)

线粒体提取试剂盒

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线粒体提取试剂盒

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