北京SYA257型单增李斯特氏菌单重凝胶PCR检测试剂盒多少钱

特别声明：本产品及我公司所售其他产品均为科研类试剂产品，严禁用于药物、YL及其他非科研用途。

北京百奥莱博致力于最快速、最有效的检测产品，包括北京SYA257型单增李斯特氏菌单重凝胶PCR检测试剂盒多少钱在内的细菌PCR检测试剂盒产品是我公司倾力打造的优势产品，欢迎选购。

名称：北京SYA257型单增李斯特氏菌单重凝胶PCR检测试剂盒多少钱
品Pai：百奥莱博
产地：国产|进口
编号：SYA257
等级：科研试剂

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·诺如病毒G1/ G2分型双重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA215
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·东部马脑炎病毒单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA234
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·猪口蹄疫病毒A型抗体ELISA检测试剂盒
编号：SYA645
等级：科研实验专用
规格：192次/盒|480次/盒

·猫源性成分单重荧光PCR检测试剂盒(定量)
编号：SYA308
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·H5/H7/H9型禽流感病毒三重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA170
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·立氏立克次体单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA128
等级：科研实验专用
规格：48次/盒
一、简介：
本试剂盒用一对立氏立克次体特异性引物，结合一条特异性探针，用荧光PCR技术对立氏立克次体的核酸进行体外扩增检测，用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。

二、用途：
该试剂盒适合于检测全血等样本中的立氏立克次体，用于立氏立克次体感染的辅助诊断，其检测结果仅供参考。

三、试剂盒组成：(48T)
组份 数量 规格
立氏立克次体反应液(qPCR MIX) 1管 720uL/管
DNA抽提液(DNA Extraction) 2管 1.5mL/管
阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
立氏立克次体阳性对照(PTC) 1管 50μL/管

四、储存条件及有效期：
本试剂盒于-20℃以下保存，有效期为6个月。

五、荧光PCR仪器适用范围：
ABI系列、MJ系列、Roche系列，博日系列及其他荧光定量PCR检测仪。

六、样品采集、前处理与DNA提取
6.1 样品的采集
用注射器取血5mL至EDTA-2Na抗凝管。
6.2 样本前处理
取抗凝血下层血细胞50uL，加入100uL双蒸水吹匀。
6.3 DNA提取
可采用PCR试剂盒配备的DNA抽提液，按以下说明进行DNA核酸的粗提。也可采购北京百奥莱博科技有限公司生产的DNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套)或其他合适的商业化产品，并按照相应试剂盒说明进行操作。
对上述处理好的样本加入等体积核酸提取液(固体标本加入50μL核酸提取液)，100℃恒温处理10min，13000rpm离心5min，取上清液转移至新的1.5mL EP管，-20℃保存；
 注：阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取)，直接取5µL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高，建议ZH在样品制备区域加入阳性对照。

七、检测步骤
7.1 试剂的准备
从试剂盒中取出荧光PCR反应液(qPCR MIX)，冰上融化并振荡混匀后，10000rpm离心10s。
设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照)，每个测试反应体系配制如下表：
试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
荧光PCR反应液 15µL N×15µL
计算好各试剂的使用量，加入一适当体积洁净离心管中，充分混匀，10000rpm离心10s，向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL荧光PCR反应液，向每管中加入处理后样品/阴性对照(NTC)/阳性对照(PTC)5μL，10000rpm瞬时离心10秒。
7.2 qPCR反应条件
将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。
推荐循环条件:
1循环 50℃ for 2 min
预变性 1循环 95℃ for 10 min
PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
60℃ for 60 sec
在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团：设置为FAM。淬灭基团：NONE，请勿选择ROX 参比荧光。

八、结果分析
8.1 结果分析条件设定
直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的ZG点为准。
8.2 试验成立判定
（1） 阴性对照：不应产生任何的扩增曲线。
（2） 阳性对照：均产生扩增曲线。
（3） 以上条件应同时满足 ，否则，此次试验视为无效。
8.3 结果判定
（1） 在试验成立的条件下，Ct值≤35的样本为阳性，表明立氏立克次体核酸阳性。
（2） Ct值显示为无的样本为阴性样本，表明立氏立克次体核酸阴性。
（3） 如果Ct值>35，判为可疑样品。对于可疑样品，先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线，则为可疑阳性，否则判为阴性。
（4） 对于可疑阳性样品，重新抽提核酸，再次进行立氏立克次体 qPCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线，判为样本阳性，表明立氏立克次体核酸阳性；否则判为样本阴性。

九、注意事项：
（1） 初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
（2） 所有使用的离心管高压灭菌，而且必须不含DNA酶。
（3） PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等)，防止实验室污染。
（4） 样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行，以免污染。
（5） 试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。



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·单纯疱疹病毒单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA142
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·Nipah病毒单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA237
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·呼吸道合胞病毒(RSV)B亚型单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA173
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·金黄色葡萄球菌毒性休克综合征毒素(TSST-1)单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA038
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·空肠弯曲菌单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA010
英文名称：Fluorescent PCR detection kit for Campylobacter jejuni
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·鸡伤寒沙门氏菌(SPP.T)单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA389
英文名称：Fluorescent PCR detection kit for Campylobacter jejuni
等级：科研实验专用
规格：48次/盒

·贝氏柯克斯体单重荧光PCR检测试剂盒
编号：SYA133
英文名称：Fluorescent PCR detection kit for Campylobacter jejuni
等级：科研实验专用
规格：48次/盒
本试剂盒适合于检测全血等样本中的贝氏柯克斯体通用，用于贝氏柯克斯体通用感染的辅助诊断，其检测结果仅供参考。

本试剂盒用一对贝氏柯克斯体通用特异性引物，结合一条特异性探针，用荧光PCR技术对贝氏柯克斯体通用的核酸进行体外扩增检测，用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。

试剂盒组成：

 

组分	数量	规格
贝氏柯克斯体反应液(qPCR MIX)	1管	672μL/管
DNA抽提液(DNA Extraction)	2管	1.5mL/管
酶混合物(Enzymes MIX)	1管	48μL/管
阴性对照(NTC)	1管	50μL/管
贝氏柯克斯体阳性对照(PTC)	1管	50μL/管

储存条件：-20℃以下，有效期6个月。

使用方法：

一、样品采集：
用注射器取血5mL至EDTA-2Na抗凝管，取抗凝血下层血细胞50μL，加入100μL双蒸水吹匀。

二、DNA提取：
可采用PCR试剂盒配备的DNA抽提液，按以下说明进行DNA核酸的粗提。也可采购北京百奥莱博科技有限公司生产的DNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套)或其他合适的商业化产品，并按照相应试剂盒说明进行操作。
对上述处理好的样本加入等体积核酸提取液(固体标本加入50μL核酸提取液)，100℃恒温处理10min，13000rpm离心5min，取上清液转移至新的1.5mL EP管，-20℃保存；
 注：阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取)，直接取5µL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高，建议ZH在样品制备区域加入阳性对照。

三、检测步骤：
1．试剂的准备
从试剂盒中取出荧光PCR反应液(qPCR MIX)、酶混合物(Enzymes MIX)，冰上融化并振荡混匀后，10000rpm离心10s。
设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照)，每个测试反应体系配制如下表：

试剂	每个反应加入的量	N个反应加入的量
荧光PCR反应液	14µL	N×14µL
酶混合物	1 µL	N×1µL
总量	15 µL	N×15µL

计算好各试剂的使用量，加入一适当体积洁净离心管中，充分混匀，10000rpm离心10s，向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL荧光PCR反应液，向每管中加入处理后样品/阴性对照(NTC)/阳性对照(PTC)5μL，10000rpm瞬时离心10秒。
2．qPCR反应条件
将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。推荐循环条件：

1循环

50℃ for 2 min预变性

1循环

95℃ for 10 minPCR扩增

40循环

95℃ for 15 sec 60℃ for 60 sec

在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团：设置为FAM。淬灭基团：NONE，请勿选择ROX参比荧光。

四、结果分析：
1．结果分析条件设定
直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的ZG点为准。
2．试验成立判定
➤阴性对照：不应产生任何的扩增曲线。
➤阳性对照：均产生扩增曲线。
➤以上条件应同时满足 ，否则，此次试验视为无效。
3．结果判定
➤在试验成立的条件下，Ct值≤35的样本为阳性，表明贝氏柯克斯体核酸阳性。
➤Ct值显示为无的样本为阴性样本，表明贝氏柯克斯体核酸阴性。
➤如果Ct值>35，判为可疑样品。对于可疑样品，先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线，则为可疑阳性，否则判为阴性。
➤对于可疑阳性样品，重新抽提核酸，再次进行贝氏柯克斯体 qPCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线，判为样本阳性，表明贝氏柯克斯体核酸阳性；否则判为样本阴性。

五、注意事项：
➤初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
➤所有使用的离心管高压灭菌，而且必须不含DNA酶。
➤PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等)，防止实验室污染。
➤样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行，以免污染。
➤试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

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