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北京现货猪链球菌/脑膜炎奈瑟菌双重荧光PCR检测试剂盒批发

产品信息
  • 特别声明:本产品及我公司所售其他产品均为科研类试剂产品,严禁用于药物、YL及其他非科研用途。

    北京百奥莱博致力于最快速、最有效的检测产品,包括北京现货猪链球菌/脑膜炎奈瑟菌双重荧光PCR检测试剂盒批发在内的细菌PCR检测试剂盒产品是我公司倾力打造的优势产品,欢迎选购。


    名称:北京现货猪链球菌/脑膜炎奈瑟菌双重荧光PCR检测试剂盒批发
    编号:SYA113
    品Pai:百奥莱博
    规格:48次/盒
    产地:国产|进口

    欲了解更多北京现货猪链球菌/脑膜炎奈瑟菌双重荧光PCR检测试剂盒批发的品Pai、产地、价格及说明书等产品信息,请致电北京百奥莱博科技有限公司,我们将竭诚为您服务,另外,以下产品正在火爆促销:

    ·禽传染性支气管炎病毒(IBV)单重荧光PCR检测试剂盒(定性/定量)
    编号:SYA356
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒|96次/盒
    一、简介:
    本试剂盒用一对禽传染性支气管炎病毒特异性引物,结合一条特异性探针,用一步法荧光RT-PCR技术对禽传染性支气管炎病毒RNA进行体外扩增检测,用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。

    二、用途:
    该试剂盒适合于检测气管渗出物、支气管和肺组织、肾脏或输卵管等标本中禽传染性支气管炎病毒(AIBV)RNA,用于禽传染性支气管炎病毒(AIBV)感染的辅助诊断及流行病调查,其检测结果仅供参考。

    三、试剂盒组成:(48T)
    组份 数量 规格
    禽传染性支气管炎荧光qRT-PCR反应液(AIBV-qRT-PCR MIX) 1管 672μL/管
    酶混合物(Enzymes MIX) 1管 48μL/管
    无核酸酶水(Nuclease-Free Water) 1管 500μL/管
    阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
    阳性对照(AIBV-PTC 107copies/μL) 1管 50μL/管
    阳性对照(AIBV-PTC 106copies/μL) 1管 50μL/管
    阳性对照(AIBV-PTC 105copies/μL) 1管 50μL/管
    阳性对照(AIBV-PTC 104copies/μL) 1管 50μL/管
    阳性对照(AIBV-PTC 103copies/μL) 1管 50μL/管
    阳性对照(AIBV-PTC 107copies/μL) 1管 50μL/管

    四、储存条件及有效期:
    本试剂盒于-20℃以下保存,有效期为6个月。

    五、荧光PCR仪器适用范围:
    ABI系列,Roche系列等荧光定量PCR检测仪等。

    六、样品的采集与RNA提取
    6.1 样品的采集
    按照相关标准采集。标本短期内可保存于-20℃,长期保存可置-80℃,但不能超过6个月,标本运送应采用0℃冰壶。
    6.1.1 血清:用一次性无菌注射器抽取静脉血2mL,注入无菌的干燥玻璃管,室温(22-25℃)放置30-60min,血标本可自发完成凝集析出血清,或直接使用水平离心机,3000rpm离心5min,吸取上层血清,转移至1.5mL灭菌离心管。
    6.1.2 血浆:用一次性无菌注射器抽取静脉血2mL,注入含EDTA2Na(乙二*(代"胺")四乙酸二*)或柠檬酸*抗凝剂的玻璃管,立即轻轻颠倒玻璃管混合5-10次,使抗凝剂与静脉血充分混匀,5-10min后即可分离出血浆,转移至1.5mL灭菌离心管。
    6.1.3 拭子、分泌物等样品:在装有拭子或分泌物的离心管中加入500µL PBS或生理盐水,剧烈振荡30s。棉拭子尽量挤出液体转移到无RNA酶污染的离心管中,6000rpm离心20s,取上清备用。
    6.1.4 病灶组织样品:称取组织约0.1g于研磨器或组织匀浆器中研磨(置于冰上或加入液氮),再加1mL生理盐水研磨至无块状物,然后将样品转至1.5mL灭菌离心管中,8000rpm离心2min,取上清液于1.5mL灭菌离心管中。
    6.2 RNA提取
    可采购北京百奥莱博科技有限公司生产的RNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套)或其他合适的商业化产品,并按照相应试剂盒说明进行操作。
     注:阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取),直接取5µL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高,建议ZH在样品制备区域加入阳性对照。

    七、检测步骤:
    7.1 试剂的准备
    从试剂盒中取出荧光qRT-PCR反应液(AIBV-qRT-PCR MIX)、酶混合物(Enzymes MIX),冰上融化并振荡混匀后,10000rpm离心10s。
    设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照),每个测试反应体系配制如下表:
    试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
    荧光PCR反应液 14µL N×14µL
    酶混合物 1µL N×1µL
    总量 15µL N×15µL
    计算好各试剂的使用量,加入一适当体积洁净离心管中,充分混匀,10000rpm离心10s,向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL,向每管中加入处理后样品/阴性对照(NTC)/阳性对照(AIBV-PTC)5μL,10000rpm瞬时离心10秒。
    7.2 qRT-PCR反应条件
    将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。
    推荐循环条件:
    反转录(Reverse Transcription) 1循环 45℃ for 10 min
    预变性 1循环 95℃ for 10 min
    PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
    60℃ for 45 sec
    在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团:设置为FAM,淬灭基团:NONE,请勿选择ROX参比荧光。

    八、结果分析:
    8.1 结果分析条件设定
    直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整,以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的ZG点为准。
    8.2 试验成立判定
    (1) 阴性对照(NTC):不应产生任何的扩增曲线。
    (2) 阳性对照(AIBV-PTC):均产生扩增曲线。
    (3) 以上条件应同时满足,否则,此次试验视为无效。
    8.3 结果判定
    (1) 在试验成立的条件下,Ct值≤35的样本为阳性,表明SEA核酸阳性。
    (2) Ct值显示为无的样本为阴性样本,表明SEA核酸阴性。
    (3) 如果35<Ct值≤40,判为可疑样品。对于可疑样品,先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线,则为可疑阳性,否则判为阴性。
    (4) 对于可疑阳性样品,重新抽提核酸,再次进行SEA qPCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线,判为样本阳性,表明SEA核酸阳性;否则判为样本阴性。
    (5) 标准曲线相关系数数值介于0.97~1之间。(相关系数数值等同于r2值),根据斜率及Y轴截距列出计算公式,并通过标准曲线计算样品RNA含量拷贝数。
    例如:Y轴截距=41.5 斜率=-3.83
    公式为:Y=-3.83(logX)+41.5

    九、注意事项:
    (1) 初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
    (2) 所有使用的离心管高压灭菌,而且必须不含RNA酶。
    (3) PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等),防止实验室污染。
    (4) 样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行,以免污染。
    (5) 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。




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    ·副结核(paratuberculosis)单重荧光PCR检测试剂盒
    编号:SYA503
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒

    ·猪瘟(CSFV)单重凝胶PCR检测试剂盒
    编号:SYA548
    等级:科研实验专用
    规格:10次/盒|48次/盒

    ·玉米转基因Bt176单重凝胶PCR检测试剂盒
    编号:SYA280
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒

    ·肉毒杆菌E型单重荧光PCR检测试剂盒
    编号:SYA021
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒

    ·牛结核杆菌抗体ELISA检测试剂盒(筛选)
    编号:SYA653
    等级:科研实验专用
    规格:192次/盒

    ·禽流感病毒H9亚型(AIV-H9)单重荧光PCR检测试剂盒
    编号:SYA340
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒|96次/盒

    ·立氏立克次体单重荧光PCR检测试剂盒
    编号:SYA128
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒
    一、简介:
    本试剂盒用一对立氏立克次体特异性引物,结合一条特异性探针,用荧光PCR技术对立氏立克次体的核酸进行体外扩增检测,用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。

    二、用途:
    该试剂盒适合于检测全血等样本中的立氏立克次体,用于立氏立克次体感染的辅助诊断,其检测结果仅供参考。

    三、试剂盒组成:(48T)
    组份 数量 规格
    立氏立克次体反应液(qPCR MIX) 1管 720uL/管
    DNA抽提液(DNA Extraction) 2管 1.5mL/管
    阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
    立氏立克次体阳性对照(PTC) 1管 50μL/管

    四、储存条件及有效期:
    本试剂盒于-20℃以下保存,有效期为6个月。

    五、荧光PCR仪器适用范围:
    ABI系列、MJ系列、Roche系列,博日系列及其他荧光定量PCR检测仪。

    六、样品采集、前处理与DNA提取
    6.1 样品的采集
    用注射器取血5mL至EDTA-2Na抗凝管。
    6.2 样本前处理
    取抗凝血下层血细胞50uL,加入100uL双蒸水吹匀。
    6.3 DNA提取
    可采用PCR试剂盒配备的DNA抽提液,按以下说明进行DNA核酸的粗提。也可采购北京百奥莱博科技有限公司生产的DNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套)或其他合适的商业化产品,并按照相应试剂盒说明进行操作。
    对上述处理好的样本加入等体积核酸提取液(固体标本加入50μL核酸提取液),100℃恒温处理10min,13000rpm离心5min,取上清液转移至新的1.5mL EP管,-20℃保存;
     注:阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取),直接取5µL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高,建议ZH在样品制备区域加入阳性对照。

    七、检测步骤
    7.1 试剂的准备
    从试剂盒中取出荧光PCR反应液(qPCR MIX),冰上融化并振荡混匀后,10000rpm离心10s。
    设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照),每个测试反应体系配制如下表:
    试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
    荧光PCR反应液 15µL N×15µL
    计算好各试剂的使用量,加入一适当体积洁净离心管中,充分混匀,10000rpm离心10s,向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL荧光PCR反应液,向每管中加入处理后样品/阴性对照(NTC)/阳性对照(PTC)5μL,10000rpm瞬时离心10秒。
    7.2 qPCR反应条件
    将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。
    推荐循环条件:
    1循环 50℃ for 2 min
    预变性 1循环 95℃ for 10 min
    PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
    60℃ for 60 sec
    在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团:设置为FAM。淬灭基团:NONE,请勿选择ROX 参比荧光。

    八、结果分析
    8.1 结果分析条件设定
    直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整,以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的ZG点为准。
    8.2 试验成立判定
    (1) 阴性对照:不应产生任何的扩增曲线。
    (2) 阳性对照:均产生扩增曲线。
    (3) 以上条件应同时满足 ,否则,此次试验视为无效。
    8.3 结果判定
    (1) 在试验成立的条件下,Ct值≤35的样本为阳性,表明立氏立克次体核酸阳性。
    (2) Ct值显示为无的样本为阴性样本,表明立氏立克次体核酸阴性。
    (3) 如果Ct值>35,判为可疑样品。对于可疑样品,先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线,则为可疑阳性,否则判为阴性。
    (4) 对于可疑阳性样品,重新抽提核酸,再次进行立氏立克次体 qPCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线,判为样本阳性,表明立氏立克次体核酸阳性;否则判为样本阴性。

    九、注意事项:
    (1) 初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
    (2) 所有使用的离心管高压灭菌,而且必须不含DNA酶。
    (3) PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等),防止实验室污染。
    (4) 样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行,以免污染。
    (5) 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。



    北京现货猪链球菌/脑膜炎奈瑟菌双重荧光PCR检测试剂盒批发关键词:百奥莱博,SYA113,猪链球菌/脑膜炎奈瑟菌双重荧光PCR检测试剂盒


    ·冠状病毒(SARS)单重荧光PCR检测试剂盒
    编号:SYA179
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒

    ·诺如病毒G1型单重荧光PCR检测试剂盒
    编号:SYA201
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒

    ·幽门螺旋杆菌(HP)单重荧光PCR检测试剂盒
    编号:SYA095
    等级:科研实验专用
    规格:48次/盒
    一、简介
    本试剂盒用一对幽门螺旋杆菌特异性引物,结合一条特异性探针,用荧光PCR技术对幽门螺旋杆菌核酸进行体外扩增检测,用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。

    二、用途
    该试剂盒适用于检测水样粪便、疑似污染的水、食物等样本中的幽门螺旋杆菌,用于幽门螺旋杆菌(HP)的辅助诊断,其检测结果仅供临床参考。

    三、试剂盒组成(48T)
    组份 数量 规格
    HP反应液(HP-qPCR MIX) 1管 672μL/管
    DNA抽提液(DNA Extraction) 2管 1.5mL/管
    酶混合物(Enzymes MIX) 1管 48μL/管
    阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
    HP阳性对照(HP-PTC) 1管 50μL/管

    四、荧光PCR仪器适用范围
    ABI系列、MJ系列、Roche系列,博日系列及其他荧光定量PCR检测仪。

    五、储存条件及有效期:
    本试剂盒于-20℃以下保存,有效期为6个月。

    六、样品采集、前处理与DNA提取
    6.1 样品采集
    水样便取0.5-1mL;疑似污染的食物取1g。
    6.2 样本前处理:
    水样便1300rpm离心2min,去尽上清;疑似污染的食物用手术剪剪碎混匀后取0.05g于研磨器中研磨,加入1.5mL生理盐水后继续研磨,待匀浆后转至1.5mL灭菌离心管中,8000rpm离心2min,取上清液100μL于1.5mL灭菌离心管中;疑似污染的水直接取100μL。
    6.3 DNA提取
    可采用PCR试剂盒配备的DNA抽提液,按以下说明进行DNA核酸的粗提。也可采购北京百奥莱博科技有限公司生产的DNA提取试剂盒(过柱法-荧光配套)或其他合适的商业化产品,并按照相应试剂盒说明进行操作。
    6.3.1液体培养物:取液体培养物100μL加到1.5mL无菌离心管中,8000rpm离心3min,尽量吸弃上清,加入50μL DNA抽提液充分混匀,100℃恒温10min,13000rpm离心3min,取上清5μL进行PCR反应。
    6.3.2固体培养物:挑取单克隆菌落与50μL DNA抽提液充分混匀,100℃恒温10min,13000rpm离心3min,取上清5μL进行PCR反应。
    6.3.3 粪便样品:挑取米粒大小粪便于灭菌离心管中,加入0.5mL生理盐水,振荡混匀,13000rpm离心3分钟,弃上清,沉淀中加入50μL DNA抽提液充分混匀,100℃恒温10min,13000rpm离心3min取上清5μL进行PCR反应。
    6.3.4 其他液体标本:取标本2-3mL,13000rpm离心3min,弃上清,沉淀中加入50μL DNA抽提液充分混匀,100℃恒温10min,13000rpm离心3min取上清5μL进行PCR反应。
     注:建议采用相关标准方法进行前增菌,并按照6.3.1方法进行提取。阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取),直接取5µL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高,建议ZH在样品制备区域加入阳性对照。

    七、检测步骤:
    7.1 试剂的准备
    从试剂盒中取出荧光PCR反应液(HP-qPCR MIX)、酶混合液(Enzymes MIX),冰上融化并振荡混匀后,10000rpm离心10s。
    设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照),每个测试反应体系配制如下表:
    试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
    荧光PCR反应液 14µL N×14µL
    酶混合液 1µL N×1µL
    总量 15µL N×15µL
    计算好各试剂的使用量,加入一适当体积洁净离心管中,充分混匀,10000rpm离心10s,向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL荧光PCR反应液,向每管中加入处理后样品/阴性对照(NTC)/阳性对照(HP-PTC)5μL,10000rpm瞬时离心10秒。
    7.2 qPCR反应条件
    将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。
    推荐循环条件:
    1循环 50℃ for 2 min
    预变性 1循环 95℃ for 10 min
    PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
    60℃ for 60 sec
    在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团:设置为FAM。淬灭基团:NONE,请勿选择ROX参比荧光。

    八、结果分析
    8.1 结果分析条件设定
    直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整,以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的ZG点为准。
    8.2 试验成立判定
    (1) 阴性对照(NTC):不应产生任何的扩增曲线。
    (2) 阳性对照(HP-PTC):均产生扩增曲线。
    (3) 以上条件应同时满足,否则,此次试验视为无效。
    8.3 结果判定
    (1) 在试验成立的条件下,Ct值≤35的样本为阳性,表明幽门螺旋杆菌核酸阳性。
    (2) Ct值显示为无的样本为阴性样本,表明幽门螺旋杆菌核酸阴性。
    (3) 如果35<Ct值≤40,判为可疑样品。对于可疑样品,先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线,则为可疑阳性,否则判为阴性。
    (4) 对于可疑阳性样品,重新抽提核酸,再次进行幽门螺旋杆菌qPCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线,判为样本阳性,表明幽门螺旋杆菌核酸阳性;否则判为样本阴性。

    九、注意事项:
    (1) 初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
    (2) 所有使用的离心管应高压灭菌,而且必须不含DNA酶。
    (3) PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等),防止实验室污染。
    (4) 样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行,以免污染。
    (5) 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。




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