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琼脂糖预制胶 1% 8wells 7*10cm

产品信息
  • 产品简介：
    琼脂糖凝胶电泳是分离和纯化DNA 片段的常用技术。一般琼脂糖凝胶电泳适用于大小在0.2kb～50kb范围内的DNA片段。 三种不同构型分子进行电泳时的迁移速度大小顺序为：超螺旋DNA>线性DNA>开环DNA。
    • 万生昊天的Precast gel for Agarose是一款安全、快捷、高性能的琼脂糖凝胶，常用于核酸电泳。
    • 采用自动化的灌胶生产技术，确保了产品质量的高稳定性和重复性。
    • 在180V电压下， 电泳50分钟即可完成。
    • 兼容市场上主流的电泳槽，如BIORAD, Invitrogen, 天能和君意东方等
    • 提供多种浓度和尺寸
    可选浓度：1.0%；2.0%；3.0%；4.0%
    可选尺寸：7*10cm；6*12cm
    可选孔数：7wells；8wells；10wells；15wells
    注意：本产品在凝胶中预制了核酸染料电泳结束后可直接在300 nm左右 的UV下观察。（不要使用波长为260 nm或360 nm的UV，否则检测灵敏度会降低。）
    选择适合的电泳缓冲液：
    较高浓度的胶有利于提高小分子量核酸的分辨率，常规一般使用TBE缓冲液。
    电泳时使用新制的缓冲液可以明显提高电泳效果。注意电泳缓冲液多次使用后，离子强度降低，PH值上升，缓冲性能下降，可能使DNA电泳产生条带模糊和不规则的DNA带迁移的现象。
    选择适合的Marker：
    DNA电泳一定要使用DNA Marker或已知大小的正对照DNA来估计DNA片段大小。Marker的选择要适中，Marker应该选择在目标片段大小附近ladder较密的，这样对目标片段大小的估计才比较准确。如果marker太大就可能跑不开，挤到一起，起不到marker的作用。
    操作步骤：
    设备和耗材 试剂
    移液器 10xTBE缓冲液（粉剂）
    电泳仪电源 DNA相对分子质量标准样品
    水平式凝胶电泳槽 上样缓冲液
    凝胶成像系统  
    样品  
    枪头  

    1．准备：将琼脂糖预制胶取出置于电泳槽中，然后向槽内加入0.5×TBE稀释缓冲液至液面恰好没过凝胶表面。
    2．加样：用移液器小心将样品加入点样孔中。上样时要小心不要将点样孔底部凝胶刺穿。
    3．电泳：加完样后，连接好电线和电源，注意正负极，接通电源。恒压180V。
    4．观察：戴好手套小心取出凝胶，放在干净的塑料膜或者托盘上，置于凝胶成像系统下拍照。
    5．清洁：将实验过程中所用电泳设备清洗晾干并置于原位。

    选择适合的凝胶浓度：
    对于琼脂糖凝胶电泳浓度通常在0.5～2％之间，低浓度的用来进行大片段核酸的电泳，高浓度的用来进行小片段分析。低浓度胶易碎，需小心操作。注意高浓度的胶可能使分子大小相近的DNA带不易分辨，造成条带缺失现象。
    琼脂浓度 DNA相对分子质量 孔数 尺寸 货号 缓冲液
    1.0% 500-7000bp 7wells 7*10cm PMA2019-1-1S 0.5XTBE
    6*12cm PMA2019-1-2S 0.5XTBE
    8wells 7*10cm PMA2019-1-1E 0.5XTBE
    6*12cm PMA2019-1-2E 0.5XTBE
    10wells 7*10cm PMA2019-1-1T 0.5XTBE
    6*12cm PMA2019-1-2T 0.5XTBE
    15wells 7*10cm PMA2019-1-1F 0.5XTBE
    6*12cm PMA2019-1-2F 0.5XTBE
    2.0% 100-2000bp 7wells 7*10cm PMA2019-2-1S 0.5XTBE
    6*12cm PMA2019-2-2S 0.5XTBE
    8wells 7*10cm PMA2019-2-1E 0.5XTBE
    6*12cm PMA2019-2-2E 0.5XTBE
    10wells 7*10cm PMA2019-2-1T 0.5XTBE
    6*12cm PMA2019-2-2T 0.5XTBE
    15wells 7*10cm PMA2019-2-1F 0.5XTBE
    6*12cm PMA2019-2-2F 0.5XTBE
    3.0% 100-2000bp 7wells 7*10cm PMA2019-3-1S 0.5XTBE
    6*12cm PMA2019-3-2S 0.5XTBE
    8wells 7*10cm PMA2019-3-1E 0.5XTBE
    6*12cm PMA2019-3-2E 0.5XTBE
    10wells 7*10cm PMA2019-3-1T 0.5XTBE
    6*12cm PMA2019-3-2T 0.5XTBE
    15wells 7*10cm PMA2019-3-1F 0.5XTBE
    6*12cm PMA2019-3-2F 0.5XTBE
    4.0% 20-500bp 7wells 7*10cm PMA2019-4-1S 0.5XTBE
    6*12cm PMA2019-4-2S 0.5XTBE
    8wells 7*10cm PMA2019-4-1E 0.5XTBE
    6*12cm PMA2019-4-2E 0.5XTBE
    10wells 7*10cm PMA2019-4-1T 0.5XTBE
    6*12cm PMA2019-4-2T 0.5XTBE
    15wells 7*10cm PMA2019-4-1F 0.5XTBE
    6*12cm PMA2019-4-2F 0.5XTBE
    请根据您的实验需求选购合适的凝胶浓度。


    产品保存：
    4℃可存放6个月。切勿置于0℃以下，以免凝胶发生冻裂，凝胶请勿挤压，防止凝胶变形。
     
    常见问题 可能原因 解决方案
    DNA条带模糊 DNA降解 实验过程避免核酸酶污染
    电泳缓冲液陈旧 电泳缓冲液多次使用后，离子强度降低，PH值上升，缓冲能力减弱，从而影响电泳效果
    所用电泳条件不合适 电泳时电压不应超过20V/CM，温度＜30℃，巨大DNA链电泳，温度应＜15℃，核查所用电泳缓冲液的缓冲能力，注意经常更换
    染料见光易分解 4℃，避光低温保存
    DNA上样量过多 减少凝胶中DNA上样量
    DNA含盐过高 电泳前通过乙醇沉淀去除多余盐分
    有蛋白污染 电泳前酚抽提去除蛋白
    DNA变性 电泳前勿加热，用20mM Nacl 缓冲液稀释DNA
    不规则DNA带迁移 电泳条件不合适 电泳时电压不应超过20V/CM，温度＜30℃，巨大DNA链电泳，温度应＜15℃，核查所用电泳缓冲液的缓冲能力，注意经常更换
    DNA变性 电泳前勿加热，用20mM Nacl 缓冲液稀释DNA
    带弱或无DNA带 DNA上样量不够 增加DNA上样量，凝胶电泳比琼脂糖电泳灵敏度高，上样量可适当降低
    DNA降解 实验过程避免核酸酶污染
    DNA跑出凝胶 缩短电泳时间，降低电压，增强凝胶浓度
    所用光源不合适 电泳结束后在300 nm左右 的UV下观察。注意：不要使用波长为260 nm或360 nm的UV，否则检测灵敏度会降低。
    DNA带缺失 DNA跑出凝胶 缩短电泳时间，降低电压，增强凝胶浓度
    分子大小相近的DNA带不易分辨 增加电泳时间，核准正确凝胶浓度
    DNA变性 电泳前勿加热，用20mM Nacl 缓冲液稀释DNA
    DNA链巨大，常规凝胶电泳不合适 在脉冲凝胶电泳上分析
    电泳时Ladder扭曲 配胶的缓冲液和电泳缓冲液不是同时配置 同时配置，电泳缓冲液高出液面1-2mm即可
    电泳时电压过高 电泳时电压不应超过20V/CM
    温馨提示：不可用于临床ZL。

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