免疫组化实验外包服务

嘉美免疫组化实验特色介绍

一、嘉美实验可以提供：实验所需抗体，即提供一抗

二、嘉美实验可以提供：提供一抗之外，所有免疫组化实验试剂

三、实验委托者只需要提供：组织、蜡块、切片，任意一种标本即可


 

一、免疫组化实验介绍

免疫组化是应用免疫学基本原理——抗原抗体反应，即抗原与抗体特异性结合的原理，通过化学反应使标记抗体的显色剂 (荧光素、酶、金属离子、同位素) 显色来确定组织细胞内抗原(多肽蛋白质)，对其进行定位、定性及定量的研究，称为免疫组织化学技术(immunohistochemistry)或免疫细胞化学技术(immunocytochemistry)。

二、免疫组化主要步骤（sABC法为例子）

1. 洗载玻片: 将载玻片置于重铬酸钾和浓H2SO4混合液中,目的是为了是载玻片上的硅胶等除去,同时使一些肉眼看不见的凹凸不平的表面变平整,便于组织吸附,然后置于清水中清洗,除去残余的重铬酸钾和浓H2SO4(大约冲一个小时左右),再将载玻片浸泡于酒精之中, 然后放到架子上,置于37°C温箱中，将多聚赖氨酸涂布于玻片的表面，由于Lys带正电，而大多数的组织带负电荷，从而产生吸附作用。

2. 包埋组织: 先在铁模具中加入一些液态石蜡，先稍微冷却，然后再将待包埋的组织置于石蜡之中，并排列整齐，再将塑料模具盒盖上，加入少许液体石蜡，进行冷冻，使石蜡变成固态。

3. 切片：将包埋好的组织从模具上取下来，并置于石蜡切片机上，切片机通过调节上下左右来来使组织和切割方向一致，然后调节切片的厚度，一般为5 um,如果比较难切，则可以适当调整厚度，用毛笔将切割的载玻片向外拉，并用小镊子将包含有完整组织的载玻片置于40°C温水中。

4. 捞组织：当组织载玻片置于40°C温水中之前，要先将水浴中的气泡赶走，以免气泡受热上浮而贴到组织上，组织受热展开，Best是组织不起皱纹，用载玻片捞组织时，一般取载玻片的下1/3或者下1/2一般每种组织捞5-6张，其中2-3张是备用的，每张载玻片上通常捞两份组织，做对照使用，这样形成的误差就比较小了，而且捞载玻片的时候Best方向一致，以便观察，再将捞出来的载玻片置于架子上，放入37°C温箱中烘干。

5. 脱蜡：依次将载玻片放入二甲苯-二甲苯-酒精-酒精-95%酒精-90%酒精-80%酒精-70%酒精，起脱蜡作用的主要是二甲苯,依据的是相似相溶的原理.一般在每个试剂中放10min,天气热可以少放几分钟,相反,天气较冷的话,就要适当延长脱蜡时间,一般为12-15min.

6. 抗原修复：脱蜡后在清水中冲洗一段时间，加入3%H2O2浸泡10min，从而除去内源性的过氧化氢酶，然后倒掉H2O2，在清水中洗两次，再加入柠檬酸缓冲液，放入微波炉中蒸煮3min（中火），一般刚到沸腾即可，冷却至室温，然后再蒸煮一次，冷却至室温，蒸煮的目的是为了使抗原的位点暴露出来。

7. 血清封闭：冷却至室温后，将柠檬酸缓冲液倒掉，水洗2次，并将载玻片置于PBS中5min，洗2次，擦干组织周围的PBS液，马上加上血清，使一些非特异性的位点封闭起来，然后放入37°C温箱中半小时。血清稀释10倍（血清封闭液）。

8. 加一抗：将温箱中的载玻片取出，用吸水纸擦干载玻片反面和正面组织周围的血清，加一抗，如果做对照实验，就在对照的组织上加PBS。加完一抗后于4°C冰箱中保存过夜。

9. 加二抗：将载玻片从冰箱中取出，放入PBS中洗3次，每次5min，擦干组织周围的PBS后加上二抗,然后置于37°C温箱中半小时。

10. 加SABC: 将片子从温箱中取出, 放入PBS中洗3次，每次5min，擦干组织周围的PBS后加上SABC, 然后置于37°C温箱中半小时。SABC稀释100倍。

11. 加显色剂: 将片子从温箱中取出, 放入PBS中洗3次，每次5min，擦干组织周围的PBS后加上显色剂。（显色剂的配置：在1ml水中加1滴显色剂A，摇匀，然后加1滴显色剂B，摇匀，再加1滴显色剂C，摇匀）   A：DAB        B：H2O2        C：磷酸缓冲液

12. 复染: 将显色后的片子用清水冲洗一段时间后，浸泡于苏木精中染色，一般动物组织为半分钟，植物组织3-5min。

13. 脱水：将复染后的片子置于水中冲洗后，依次将载玻片放入70%酒精-80%酒精-90%酒精-95%酒精-酒精-酒精-二甲苯-二甲苯。每个试剂中放置2min，浸泡在二甲苯中，搬到通风柜中。

14. 封片：用中性树胶滴在组织旁边，再用盖玻片盖上，要先放平一侧，然后轻轻放下另一侧，以免产生气泡，封好片子后置于通风柜中晾干。

三、免疫组化试剂

【免疫组化的相关试剂】：Z重要的是选择好一抗、二抗或者还有三抗，注意抗体的特异性、效价和交叉反应。

【其他常用试剂有】：

1、0.01M(pH7.4)的磷酸盐缓冲生理盐水（PBS），稀释抗体和洗片子用；

2、清洁液、纯水，洗玻片用

3、多聚赖氨酸处理载玻片，防片

4、固定液：4%多聚甲醛或冷丙酮等；

5、15%~30%蔗糖，组织脱水用；

6、梯度酒精脱水、二甲苯透明、石蜡包埋，或者OCT包埋做冰冻切片；

7、抗原修复液：枸橼酸缓冲液（pH6.0）；

8、活化剂：EDTA或者Triton X-100；

9、1%~10%牛血清清蛋白（BSA）封闭液；

10、H2O2，灭活内源性过氧化物酶；

11、显色液：根据你做的酶来选择，如果是HRP就用DAB，如果是AKP，就用NBT/BCIP，免疫荧光则不需要；

12、50%缓冲甘油封片液。
 

四、免疫组化样本说明

1、石蜡切片

取材：1、组织离体后需及时固定；2、组织标本不宜过大、过厚。

固定：1、固定液：10%（4%多聚甲醛）或10%中性甲醛；2、用量：一般固定液的量与组织体积比为10:1～20:1；3、固定：适宜的固定时间，主要根据材料的大小、松密程度及固定液的穿透速度而定。

保存：切片经60℃烤片3-5小时后，可于常温或4℃干燥保存。

2、冰冻切片

取材：取材后需立即置于超低温冰箱或液氮中保存。

固定：样本冰冻切片后，应立即放入甲醇、丙酮、95%酒精、4%多聚甲醛等固定液中固定。

保存：固定好的切片自然风干，密封后置于-80℃、-20℃保存，尽快用于后续实验。

3、细胞块石蜡切片

细胞量较多的样品，可离心分离所需细胞，用中性甲醛固定后制作成琼脂细胞块，然后按照制作石蜡切片的操作流程进行切片。

4、细胞爬片

在孔板里做的细胞爬片，爬片取出后，用PBS洗涤2次（根据研究目的，PBS洗涤可选择不做），用4%多聚甲醛4℃固定15分钟，将表面液体吹干，置于-20℃保存。若在短时间内即开展实验，可在加固定液后，于4℃冰箱中放置一段时间。

5、细胞涂片

细胞涂片常用的固定液有95%酒精（Z为常用）、酒精-冰醋酸液、Ethyl ether-酒精液和Carney’s液等。 

五、免疫组化实验注意事项

1、常用的固定液为中性甲醛和4%多聚甲醛，能使大多数抗原保存良好，适用于免疫组织化学。

2、病理实验切片Best是防脱片，以免实验过程中出现掉片。若客户提供切片，应告知切片有无防脱处理。

3、骨组织、皮肤组织或脂肪含量较高的样本，实验过程中有较高的掉片几率。

4、客户可提供组织块（以10%、4%多聚甲醛或10%中性甲醛固定，如组织块极小请事先说明）、蜡块或切片（使用免疫组化专用切片，以避免实验过程中掉片）

5、待检测蛋白的种属、实验分组情况及实验背景资料、其他具体要求等需事先说明。

6、若客户提供骨组织或钙化程度较高的组织进行实验，需进行脱钙处理。

7、浸泡在固定液中的组织样本，在运输中容器需密封，防止破碎、渗漏。